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Optimized medium for the cloning of epiphytic species, pre-dosed bag for the preparation of 1L medium
See the tabs at the bottom of the page for preparation, choice of media and seeding.
Suggested in bundled dosage at lower cost or in single packets for those who do not wish to weigh themselves
Optimized medium for cloning cattleya, dendrobium, oncidium, phalaenopsis and derivatives
Use up to 24.57 g/l of medium.
Requires the addition of 7g of agar
Contains:
Store in the refrigerator
FDS M507
Download (0)Ground orchids
Type | Seed | Replate | Cloning |
Aplectrum | K400 | K400,K425 |
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Arethusa | K400,P723 | K400, K425, P748 |
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Bletia | B138/B141, B142/B470, F522 | P748, V895 |
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Bletilla | P6681, P723 | P668, P748 | O753, P793 |
Calopogon | K400, P723 | P723, P748 |
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Calypso | B138/B141, B142/B140, F522 | F522 |
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Coeloglossum | K400 | K400, K425, P748 |
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Cymbidium | M5794, P7934 | M579 |
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Cypripedium | B142/B4702, F522, K4001,2, M5513, T8392, T8422, T8492 | B138/B141, F522, K4001,2, P6681, T849 | O753, P793 |
Dactylorhiza | F522 | F522, P748 |
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Epipactis | B142/B470 | B138/B141, P668 |
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Eulophia | P723, V895 | P745, V895 |
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Goodyera | M551, P6681, P723 | P748 |
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Gymnadenia | F522, M551, P6681 | F522, M551, P748 |
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Limodorum | B142 | B142 |
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Liparis | K400 | K400, K425, P748 |
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Oeceoclades | P6681, P723, V895 | P723, V895 |
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Ophrys | M551 | M551 |
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Orchis | F522, M551, P6681 | F522, M551 |
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Paphiopedilum | P6681,2 | P6681, P668 |
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Phragmipedium | P6681,2 | P6681, P668 |
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Plantanthera | F522, K400, L472, M551, P6681, P723 | F522, M551, P723, P748 |
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Pogonia | K400 | K400 |
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Habenaria | M551, P723 | M551, P748 |
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Sacolia | K400, M551 |
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Spathoglottis | P723 | P668, P723, P748 | O753, P793 |
Spiranthes | K400, M551, P723 | M551, P748 | O753, P793 |
Thelymitra | P723, T839, T842 | P748, T839, T842, T849 |
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Tipularia | K400 | K400, K425 |
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Zeuxine | P723 | P723, P748 |
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1 Used in dilution ½
2added with 15% coconut
3 added with 10g/l sugar or 5g/l S391 or 5g/l glucose
4 added with 2g/l of peptone
Epiphytic orchids
Type | Seed | Replate | Cloning |
Ascocenda | K400, P6681, P723, P785, V895 | O156, P668 | M507 |
Brassia | K400, K425, P723 | K425, P748 | O753, P793 |
Cattleya | K400, K425, L472, P6681, P723, P785, V895 | K400, K425, O1561, P6681, P748, P785 | M507, O753 ,P793 |
Cytropodium | P723 | P723, P748 |
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Dendrobium | K400, K425, M579, V895 | K400, K425, M579, V895 | M507, O753, P793 |
Dendrophylax | P723 | P723, P748 |
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Encyclia | P723, P748 | P748 |
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Epidendrum | K400, K425, M579, P6681, P723, V895 | K400, K425, O156, P668, P748, P785, V895 |
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Gongora | K425, P723 | K425, P748 |
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Masdevallia | K400 |
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Maxillaria | P723 | P748 |
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Oncidium | O1561, P6681, P723 | O1561, P6681, P723, P748 | M507, O753, P793 |
Odontoglossum | K400, K425, O1561, P723 | K400, K425, O1561 |
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Phalaenopsis | I365, K400, O156, P656, P6681, P723, P782, P785 | I365, O156, P656, P668, P748, P785 | M507, O753, P793 |
Pleurothalis | P668, P6681, P723 | O156, O1561, P748 |
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Prosthechea | P723 | P723, P748 |
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Rhynchostylis | P723, P6681 |
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Schomburgkia | P723 | P723, P748 |
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Vanda | K400, M579, P723, P785, V895 | M579, O156, P723, P748, V895 |
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Vanilla | K400, K425 | K400, K425, V895 |
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1 Used in dilution ½
Necessary equipment :
Preparation time :
Preparation :
Weigh your medium (24.57g) and agar (7g).
Prepare a saucepan large enough to accommodate the dose of medium to prepare.
Prepare 1L of water (use osmosis or distilled water).
Pour 900ml into the cooking container and cool.
Incorporate your medium and any additives.
Use the remaining 100ml of water to recover the traces of medium left in their container.
Whisk until the boil is smooth and hold for a few minutes.
You can then sink your medium with a ladle into your seedling boxes (Approximately 16 boxes per litre of medium).
Then close your boxes on which you have already made a breathing hole and sterilize them as follows:
Then wait a fortnight of days to ensure the absence of detectable germs by their development on the medium in the form of white or coloured foam.
You are now ready to sow.
Matériel nécessaire :
Temps de préparation :
Préparation de la solution d’hypochlorite de calcium :
Attention ce produit est corrosif et dégage des vapeurs de chlore, utilisez le avec gants et lunettes de sécurité dans un endroit ventilé
Pesez 5g d’hypochlorite de calcium.
Diluez dans 100ml d’eau (Osmosée ou distillée) en agitant 5-10 min puis laissez décanter, la solution étant saturée, le trouble est normal.
Après 10 min de décantation filtrez la solution sur filtre à café en prenant soin d’entrainer le moins possible de dépôt qui se trouve au fond du flacon.
La solution finale appelée solution mère est utilisable 3-4 heures, pour sa conservation jusqu’à 1 semaine, disposez au réfrigérateur à l’abri de l’air et de la lumière.
Pour la désinfection des graines, utilisez 10Ml de solution mère diluée dans 100Ml d’eau pour les graines de Phalaenopsis et 20Ml pour les autres graines et la désinfection des capsules (« Semis en vert »), cette solution finale doit être préparée juste avant utilisation.
Préparation de la solution de désinfection de la glovebox :
Attention ce produit est corrosif et dégage des vapeurs de chlore, utilisez le avec gants et lunettes de sécurité dans un endroit ventilé
Préparez une solution d’eau de javel diluée à 50% dans l’eau (Attention, toujours verser l’eau de javel dans l’eau et non l’inverse).
Disposez cette solution dans un pulvérisateur.
Préparation de votre matériel pour le semis :
Placez vos graines dans un tube et bouchez celui-ci avec un bouchon fritté ou un bouchon caoutchouc (Autant de tubes que de types de graines à semer, assurez-vous avant de ne pas saturer votre espace de travail, vos mouvements doivent rester libres).
En cas de « Semis en vert », placez votre capsule dans un flacon rempli de solution finale de désinfection et prévoyez un scalpel.
Préparez une spatule pour la récupération des graines dans vos tubes (Vérifiez au préalable que celle-ci est de taille adaptée à la taille de vos tubes).
Préparez une pipette pour l’aspiration de la solution de désinfection des graines ainsi que le flacon de solution finale de désinfection.
Préparez autant de pots de semis que vous l’estimez nécessaire.
Préparez votre pulvérisateur avec la solution de désinfection de la glovebox.
Si vous le souhaitez, vous pouvez ajouter un flacon d’eau stérile afin de rincer vos tubes et d’ajuster la quantité de liquide dans vos flacons.
Préparation de votre glovebox et semis :
Cette étape est primordiale, une bonne disposition de votre espace de travail vous permettra un travail sain et évitera des contaminations, gardez toujours en tête que vos mouvements doivent se limiter au maximum et se faire le moins possible au-dessus de vos flacons de semis ouverts. En cas de doute pour les débutants, n’hésitez pas à faire des simulations au préalable avec des pots vides et de tubes vides afin de trouver l’organisation qui vous convient.
Disposez le couvercle de votre glovebox sur votre espace de travail et recouvrez d’une couche de sopalin.
Pulvérisez ce sopalin avec votre solution de désinfection de la glovebox.
Placez y ensuite votre matériel listé ci-dessus en le pulvérisant de solution de désinfection de la box ainsi que vos flacons et éventuellement l’eau stérile de façon à avoir un maximum de choses aux emplacements dont vous avez besoin.
Placez enfin le pulvérisateur à solution de désinfection de la glovebox ainsi que vos graines.
Retournez alors votre box sur son couvercle de façon à créer une enceinte close.
Introduisez alors vos bras dans les gants et pulvérisez l’ensemble de l’enceinte interne de votre box, laissez ensuite agir 30 Min.
Votre glovebox est maintenant stérile, répétez les opérations suivantes autant de fois que vous avez de boites et de graines.
Vous pouvez maintenant passer au semis suivant en prenant soin au préalable de rincer votre matériel (Scalpel et spatule) afin de ne pas faire de pollution croisée dans vos semis.
Attention dès que vous devez réintroduire du matériel dans la glovebox, l’opération de stérilisation de celle-ci doit être renouvelée.
Lorsque vos semis sont terminés, placer un film alimentaire sur vos boites afin d’en augmenter l’étanchéité.
Repiquage de protocormes et/ou plantules :
Cette opération se déroule comme pour le semis sauf qu’il n’est plus nécessaire de stériliser des graines, vous aurez pris soin d’ajouter une pince à votre matériel afin d’attraper les protocormes et/ou plantules et de les repiquer dans une nouvelle boite.
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