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M507-1L MURASHIGE CATTLEYA ORCHID MULTIPLICATION MEDIUM

M507-1L MURASHIGE CATTLEYA ORCHID MULTIPLICATION MEDIUM

Produit reconditionné

Milieu optimisé pour le clonage d'espèces épiphytes, sachet pré-dosé pour la préparation de 1L de milieu

 

 

Voir les onglets en bas de page pour la préparation, le choix de vos milieux et le semis.

 

 

Proposé en dosage groupé pour un coût plus faible ou en sachets unitaires pour ceux qui ne souhaitent pas peser eux même


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Groupé

3,34 €

3,34 € par dose

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M507-1L MURASHIGE CATTLEYA ORCHID MULTIPLICATION MEDIUM

M507-1L MURASHIGE CATTLEYA ORCHID MULTIPLICATION MEDIUM

Milieu optimisé pour le clonage d'espèces épiphytes, sachet pré-dosé pour la préparation de 1L de milieu     Voir les onglets en bas de page pour la préparation, le choix de vos milieux et le...

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Milieu optimisé pour le clonage des cattleya, Dendrobium, Oncidium, Phalaenopsis et dérivés

S'utilise à hauteur de 24.57 g/l de milieu.

Nécessite l'ajout de 7g d'agar

Contient :

      • Ammonium nitrate 1650
      • Boric acid 6.2
      • Calcium chloryde, anhydrus 333
      • Cobalt Chloride•6H2O 0.025
      • Cupric Sulfate•5H2O 0.025
      • Ferric Sodium EDTA 36.7
      • Magnesium Sulfate, Anhydrous 181
      • Manganese Sulfate•H2O 16.9
      • Molybdic Acid (Sodium Salt) •2H2O 0.25
      • Potassium Iodide 0.83
      • Potassium Nitrate 1900
      • Potassium Phosphate, Monobasic 170
      • Zinc Sulfate•7H2O 8.6
      • Citric Acid (Free Acid) Anhydrous 150
      • Glycine (Free Base) 2
      • Indole-3-acetic Acid 0.3
      • Indole-3-butyric Acid 1.75
      • myo-Inositol 100
      • α-Naphthaleneacetic Acid 1.75
      • Nicotinic Acid (Free Acid) 0.5
      • Pyridoxine•HCl 0.5
      • Sucrose 20000
      • Thiamine•HCl 10

 

A conserver au réfrigérateur

 

  • FDS M507
    Fiche de données de sécurité du M507
 

Notice de préparation de milieu

 

Matériel nécessaire :

  1. une casserole
  2. Une cocotte-minute ou un stérilisateur
  3. Un fouet
  4. Une louche
  5. 1L de M507 Soit 24.57g et 7g d'agar
  6. Un bol doseur
  7. Des pots de semis
  8. Des pansements pour orifice de respiration
  9. Du film alimentaire
  10. Une balance de précision 0.01g

 

Temps de préparation :

  1. 15 Min pour le milieu
  2. 60 à 80 Min pour la stérilisation

 

Préparation :

Pesez votre milieu (24.57g) et l'agar (7g) .

Préparez une casserole suffisamment grande pour accueillir la dose de milieu à préparer.

Préparez  1L d’eau (Utilisez de l'eau osmosée ou distillée).

Versez 900ml dans le récipient de cuisson et tiédir.

Intégrez alors votre milieu et vos éventuels additifs.

Utilisez les 100ml d'eau restante pour récupérer les traces de milieu restées dans leur contenant.

Agitez alors au fouet jusqu'à ébullition douce et maintenir alors quelques minutes.

Vous pouvez alors couler votre milieu à la louche dans vos boites de semis (Approximativement 16 boites par litre de milieu).

Fermez alors vos boites sur lesquelles vous aurez préalablement fait un orifice de respiration et procédez à leur stérilisation comme suit :

  1. Dans votre cocotte-minute ou votre stérilisateur mettez un fond d'eau (100 à 200 ml), disposez vos boites en quinconce afin que la vapeur circule bien entre les boites.
  2. Chauffez jusqu'à ce que la soupape crépite légèrement.
  3. Maintenez alors ainsi 40Min à la cocotte-minute ou 30 Min au stérilisateur.
  4. Coupez alors le feu et laissez refroidir 40Min avant de sortir vos boites.
  5. Appliquez sur vos boites un film alimentaire pour étanchéifier au fur et à mesure de leur sortie.

Attendez alors une quinzaine de jours afin de vous assurer de l'absence de germes détectables par leur développement sur le milieu sous forme de mousse blanche ou colorée.

Vous êtes maintenant prêt à semer.

 

Note of sowing/transplanting

 

 Necessary equipment :

  1. Calcium hypochlorite
  2. 2 vials of 100 ml mini
  3. A balance of the kitchen
  4. A funnel of the kitchen
  5. Coffee Filters
  6. Some of the bleach
  7. One of the sprayers
  8. A glovebox (See our construction sheet in the middle menu)
  9. One or more test tubes with closure plug
  10. A spatula in the sky
  11. A pipette in the pipette
  12. Sterile Water (Optional)
  13. One of the scalpels
  14. A tweezer for transplanting only.

 

Preparation time :

  1. 10 Min for the equipment.
  2. 30 Min to sterilize the Glovebox.
  3. 10-15 Min for sowing and finishing.

 

 

Preparation of the calcium hypochlorite solution :

  Attention this product is corrosive and releases chlorine vapours, use it with gloves and safety glasses in a ventilated area

Weigh 5g of calcium hypochlorite.

Dilute in 100ml of water (osmosis or distilled) stirring 5-10 min then allow to decant, the solution being saturated, the disorder is normal.

After 10 min of decanting filter the solution over a coffee filter, taking care to train as little deposit as possible which is at the bottom of the bottle.

The final solution called stock solution is usable 3-4 hours, for its storage up to 1 week, arrange in the refrigerator sheltered from air and light.

For disinfecting seeds, use 10ml of diluted stock solution in 100ml of water for Phalaenopsis seeds and 20ml for other seeds and disinfection of capsules (“Green Sow”), this final solution must be prepared just before use.

 

Preparation of the glovebox disinfection solution :

  Attention this product is corrosive and releases chlorine vapours, use it with gloves and safety glasses in a ventilated area

Prepare a 50% diluted bleach solution in water (Careful, always pour bleach into water, not vice versa).

Arrange this solution in a sprayer.

 

Preparation of your planting material :

Place your seeds in a tube and seal it with a sintered cap or rubber cap (as many tubes as types of seeds to sow, make sure before you do not saturate your workspace, your movements must remain free).

In case of “Green Sowing”, place your capsule in a bottle filled with final disinfection solution and provide a scalpel.

Prepare a spatula for seed recovery in your tubing (make sure it is of the right size for the size of your tubing).

Prepare a pipette for the aspiration of the seed disinfection solution as well as the bottle of final disinfection solution.

Prepare as many seedlings as you deem necessary.

Prepare your sprayer with the glovebox disinfection solution.

If you wish, you can add a bottle of sterile water to rinse your tubes and adjust the amount of liquid in your bottles.

 

 

Preparation of your glovebox and seedlings :

This step is essential, a good arrangement of your workspace will allow you healthy work and will avoid contamination, always keep in mind that your movements must be limited to the maximum and do as little as possible toon top of your open seedlings. In case of doubt for beginners, do not hesitate to do simulations beforehand with empty pots and empty tubes in order to find the organization that suits you.

Lay your glovebox cover on your workspace and cover with a layer of Sopalin.

Spray this Sopalin with your glovebox disinfection solution.

Then place your material listed above by spraying it with disinfection solution of the box along with your vials and possibly sterile water so as to have maximum things at the locations you need.

Place the glovebox disinfection solution sprayer and your seeds.

Then return your box to its lid in order to create a closed enclosure.

Then put your arms into the gloves and spray the entire inner compound of your box, then let it work 30 Min.

Your glovebox is now sterile, repeat the following operations as many times as you have boxes and seeds.

  1. For sowing in seed :
    1. For each seed tube, remove the food film from your boxes, open them and gently put the lid on them so they are ready to hold your seeds.
    2. Then open the seed tube and, using the pipette, introduce the final seed disinfection solution (the seeds must be well distributed in the solution).
    3. Leave 2 minutes to work, waving every 15-30 seconds.
    4. Locate during this phase if your seeds are floating or flowing in the liquid (all phases 3 and 4 should not exceed 3 min).
      1. If the seeds float, then return the tube and remove the liquid gently opening the cap, the seeds will gradually remain stuck on the surface of the tube.
      2. If the seeds sink, let them settle at the bottom and gently tilt the open tube to remove the liquid and collect the seeds at the bottom.
  2. For "Green Sowing" :
    1. For each capsule bottle, retrieve the capsule and open it with your scalpel.
  3. Then collect your seeds with your spatula and spread them delicately on the middle, repeat the operation as many times as you want to make seedling boxes.
  4. If you have opted for the Sterile Water option, you can rinse your seed tubes and adjust the water in your boxes with a pipette (seeds should not swim but should not be “dry” on the middle.
  5. Then close your boxes tightly as soon as your seedling is finished and move on to the next box.

You can now switch to the next seeding by taking care first to rinse your material (scalpel and spatula) so as not to make cross pollution in your seedlings.

Attention as soon as you have to reintroduce material into the glovebox, the sterilization operation of the glovebox must be renewed.

When your seedlings are finished, place a food film on your boxes to increase their watertightness.

 

Transplanting of protocorms and/or seedlings :

This operation takes place as for seeding except that it is no longer necessary to sterilize seeds, you will have taken care to add a clip to your equipment in order to catch the protocormes and/or seedlings and to put them back in a new box.

.

 

 Orchidées Terrestres

 

Genre

Semis

Repiquage

Clonage

Aplectrum

K400

K400,K425

 

Arethusa

K400,P723

K400, K425, P748

 

Bletia

B138/B141, B142/B470, F522

P748, V895

 

Bletilla

P6681, P723

P668, P748

O753, P793

Calopogon

K400, P723

P723, P748

 

Calypso

B138/B141, B142/B140, F522

F522

 

Coeloglossum

K400

K400, K425, P748

 

Cymbidium

M5794, P7934

M579

 

Cypripedium

B142/B4702, F522, K4001,2, M5513, T8392, T8422, T8492

B138/B141, F522, K4001,2, P6681, T849

O753, P793

Dactylorhiza

F522

F522, P748

 

Epipactis

B142/B470

B138/B141, P668

 

Eulophia

P723, V895

P745, V895

 

Goodyera

M551, P6681, P723

P748

 

Gymnadenia

F522, M551, P6681

F522, M551, P748

 

Limodorum

B142

B142

 

Liparis

K400

K400, K425, P748

 

Oeceoclades

P6681, P723, V895

P723, V895

 

Ophrys

M551

M551

 

Orchis

F522, M551, P6681

F522, M551

 

Paphiopedilum

P6681,2

P6681, P668

 

Phragmipedium

P6681,2

P6681, P668

 

Plantanthera

F522, K400, L472, M551, P6681, P723

F522, M551, P723, P748

 

Pogonia

K400

K400

 

Habenaria

M551, P723

M551, P748

 

Sacolia

K400, M551

 

 

Spathoglottis

P723

P668, P723, P748

O753, P793

Spiranthes

K400, M551, P723

M551, P748

O753, P793

Thelymitra

P723, T839, T842

P748, T839, T842, T849

 

Tipularia

K400

K400, K425

 

Zeuxine

P723

P723, P748

 

1 Utilisé à dilution ½

2 additionné de 15% de coco

3 additionné de 10g/l de sucre ou 5g/l de S391 ou 5g/l de glucose

4 additionné de 2g/l de peptone

 

 

Orchidées Epiphytes

 

Genre

Semis

Repiquage

Clonage

Ascocenda

K400, P6681, P723, P785, V895

O156, P668

M507

Brassia

K400, K425, P723

K425, P748

 O753, P793

Cattleya

K400, K425, L472, P6681, P723, P785, V895

K400, K425, O1561, P6681, P748, P785

M507, O753 ,P793

Cytropodium

P723

P723, P748

 

Dendrobium

K400, K425, M579, V895

K400, K425, M579, V895

M507, O753, P793

Dendrophylax

P723

P723, P748

 

Encyclia

P723, P748

P748

 

Epidendrum

K400, K425, M579, P6681, P723, V895

K400, K425, O156, P668, P748, P785, V895

 

Gongora

K425, P723

K425, P748

 

Masdevallia

K400

 

 

Maxillaria

P723

P748

 

Oncidium

O1561, P6681, P723

O1561, P6681, P723, P748

M507, O753, P793

Odontoglossum

K400, K425, O1561, P723

K400, K425, O1561

 

Phalaenopsis

I365, K400, O156, P656, P6681, P723, P782, P785

I365, O156, P656, P668, P748, P785

M507, O753, P793

Pleurothalis

P668, P6681, P723

O156, O1561, P748

 

Prosthechea

P723

P723, P748

 

Rhynchostylis

P723, P6681

 

 

Schomburgkia

P723

P723, P748

 

Vanda

K400, M579, P723, P785, V895

M579, O156, P723, P748, V895

 

Vanilla

K400, K425

K400, K425, V895

 

1 Utilisé à dilution ½

P6681

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